題:
使用Nanodrop而不是電泳來拾取質粒DNA
A. Radek Martinez
2016-08-19 23:57:36 UTC
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我目前正在嘗試查看2種細菌是否包含質粒。我已經對細菌使用了promega質粒提取試劑盒。我對提取物產物進行了凝膠電泳(0.8%凝膠),但未顯示任何DNA的存在。我還通過Nanodrop(2000)運行了產品,得到的濃度如下:

1:6.5 ng / ul & 260/280 = 1.56
2:49.4 ng / ul & 260/280 :1.96

根據經驗,我想說#1不包含質粒,但是#2可能含有少量的質粒。請給我您對結論的看法。另外,如果還有其他測試可以嘗試確認是否存在質粒,請告訴我。

如果您的樣品被蛋白質污染(可能會發生),則得到的OD 260/280會升高,並且會錯誤地顯示某些核酸。如果您在凝膠上運行了幾微升而看不到任何東西,我將很可疑。專心致志足以看到一些東西。
運行凝膠時,DNA的數量至關重要,而不僅僅是濃度。您在凝膠上運行了多少體積的每個樣品?使用上面確定的濃度來查看應有多少DNA。如果假設的數量看起來不錯,並且您在凝膠上看不到任何東西,那我說沒有任何真正的DNA。至於測試質粒的存在,您可以嘗試將可疑樣品重新轉染到其他細菌中,因為您不需要太多拷貝的質粒即可獲得良好的菌落。
可能是這樣。我相信納米滴顯示蛋白質污染。我將嘗試濃縮質粒DNA,並增加凝膠體積。如果找不到質粒,那麼我將假定沒有蛋白質。
四 答案:
March Ho
2016-08-20 05:17:39 UTC
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由於許多不同的問題(並非詳盡無遺),因此Nanodrop上的讀數為正,但凝膠上沒有條帶:

  1. 樣品歸零錯誤
  2. 凝膠染色不完全
  3. 樣品污染
  4. 樣品加載過程中的人為錯誤
  5. ol>

    您應嘗試通過陽性排除這些可能性以便找出不一致結果背後的真正原因。

VonBeche
2016-09-19 12:30:33 UTC
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我不知道您使用了多少培養體積,但是您所看到的培養體積看起來更像是中/高拷貝質粒。我不知道您對天然質粒的期望是什麼。

除了其他答案外,它還可能是剪切的基因組DNA,粘粒(在凝膠上跑得太高而看不到),或者可能只是核苷酸(如果以某種方式弄亂了製備物)。

確定菌株是否具有質粒的另一種策略取決於對這些菌株的了解。如果您不太了解,請執行16S測序,它可能是帶有已知質粒的已知菌株。如果您已經知道這是一個新發現的菌株,請對整個事物進行排序。即使覆蓋率相對較低,質粒的存在也將非常清楚。它比質粒製備+凝膠昂貴,但您還將獲得有關該生物的許多其他信息。

Geo Vogler
2016-09-21 04:12:22 UTC
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根據您遵循該方案的方式,理論上您的樣品中也會含有細菌基因組DNA。如果嚴格遵守該協議,則不會發生這種情況,但是,如果這樣,您將能夠測量基因組DNA。但是,在瓊脂糖凝膠中,由於其太大而無法遷移,因此通常會粘在頂部附近。

例如,在裝入色譜柱之前對樣品進行渦旋處理可能會導致這種情況(請參閱Promega PureYield手冊)。

地理位置-如果可以的話,請在您的答案中添加一些參考文獻/引用文獻-我知道有時可能很難參考您可能常識的內容,但是我們對此網站非常感謝。感謝您的貢獻!
Christopher S Park
2016-09-21 12:20:53 UTC
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我建議您打開PCR克隆程序。通常,即使經過精心的PCR純化DNA和RNA後,也可能成為凝膠電泳的瓶頸,並確保瓊脂糖凝膠的質量(深度,鈍邊的空洞等),但不能達到49 ng / ul。足以進步。如果所有這些仍然不能改善您的情況,那麼可能是培養細菌培養物的問題-從細菌克隆小瓶中純化質粒後應該看起來很混濁(我的時間是8-16小時),此外,請確保避免暴露於瓊脂糖凝膠上並保持清潔並浸入冷PBS中,然後再插入緩衝的DNA(我使用了10微升-但它會根據凝膠的厚度而變化)。另外,當我使用更高的儘管可能更快,但在凝膠EP I期間施加電壓可能會有較高的垂直條紋的機會。

如果沒有任何效果,那麼我只能暗示可能的人為錯誤。最後一件事!我希望您在計數之前先清潔nanodrop,因為這可能是蛋白質中含有蛋白質的結果。祝好運!細菌也需要愛!

克里斯托弗-如果可以的話,請添加一些參考文獻或外部引用。我們總是在此站點上對此表示讚賞。感謝您的貢獻!


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